【产品名称】
商品名称:新城疫中强毒株(NDV-M)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)
Name:Newcast Deaseace Virus Mesogenic and Virulent Strains Detection Kit (Real-Time RT-PCR Method)
【包装规格】25T/盒、50T/盒
【预期用途】
新城疫是由新城疫病毒(New castle disease viurs, NDV)引起的一种禽类急性、高度接触性传染病。ND 常呈败血症经过,以呼吸困难、神经机能紊乱、粘模和浆膜出血等为主要特征[1]。根据病毒株致病力的差异,将 NDV 分为强毒力型、中等毒力型及弱毒力型。NDV 中强毒株在鸡群中传播迅速,危害严重;而弱毒株仅引起鸡群呼吸道感染和产蛋量下降,多与其它疾病共同发病而造成一定的危害[1-3]。
本试剂盒适用于检测的禽类动物肺、脾、脑等组织、呼吸道分泌物、全血等标本中新城疫中强毒株,适用于新城疫中强毒感染的辅助诊断。
【检验原理】
本试剂盒对新城疫中强毒 F 基因裂解位点设计特异性引物和探针[1-2],用一步法荧光 RT-PCR 技术对新城疫中强毒进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染病料的病原学诊断。
【试剂组成】
包装规格25T/盒50T/盒
NDV-M 反应液500μL×1 管500μL×2 管
酶液25μL×1 管50μL×1 管
NDV-M 阳性质控品50μL ×1 管50μL ×1 管
阴性质控品250μL ×1 管250μL ×1 管
说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】
ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【标本采集】
病死或扑杀禽,取肺、脾、脑等组织;待检活禽,用棉拭子取呼吸道分泌物,放于 1mL50%甘油生理盐水中;用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。
【保存和运输】
采集或处理好的样品在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h;若需长期保存,应放置-70℃以下保存,冻融不超过 3 次。
【使用方法】
1.样品处理(样本处理区)
1.1样本前处理
每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;棉拭子直接取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;全血样品待血凝后取血清 100μL,置于 1.5mL 离心管中。
1.2核酸提取
推荐采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的核酸提取或纯化试剂(磁珠法或离心柱法)进行核酸提取, 请按照试剂说明书进行操作。
2.试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满
7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂NDV-M 反应液酶液
用量19μL1μL
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20μL /管。
3.加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
4.PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;荧光通道选择:检测通道(ReporterDye)FAM,淬灭通道
(QuencherDye)NONE,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
4.3推荐循环参数设置:
步骤循环数温度时间收集荧光信号
11 cycle50℃10min否
21 cycle95℃2min否
345 cycles95℃15sec否
60℃30sec是
5.结果分析判定
5.1结果分析条件设定(请参照各仪器使用说明书进行设置,以分析 ABI7500 仪器为例)
反应结束后自动保存结果,根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用户可根据实际情况自行调整,Start 值可设在 3~15、End 值可设在 5~20,使阈值线位于扩增曲线指数期,阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线),点击 Analyze 自动获得分析结果。
5.2结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤40,且曲线有明显的指数增长曲线; 阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
5.3质控标准
阴性质控品:无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
6.检测方法的局限性
1.样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
2.样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
3.阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
4.病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
5.不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
6.试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
7.本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
【注意事项】
1.所有操作严格按照说明书进行;
2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完-全混匀并短暂离心;
3.反应液应避光保存;
4.反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
【参考文献】
[1]曹军平,胡新岗,吴双,等.荧光定量 RT-PCR 检测中、强毒力新城疫病毒方法的建立及验证.中国动物检疫,2012. [2]辽宁质量监督局.DB21/T2465-2015 新城疫强弱毒株 RT-PCR 鉴别诊断技术[S].
[3] Kant A G, Koch D J. Differentiation of virulent and non-virulent strains of NDV within 24 hours by PCR [J].AvianPathol,1997,26:837-849.
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