简要描述:马流行性感冒病毒RT-PCR检测试剂盒马流感是马、驴和骡的一种急性呼吸道疫病,由正黏病毒科 A 型流感病毒属中的两个 A 型流感病毒亚型引起,分别为H7N7(曾称为马-1 型)和 H3N8(曾称为马-2 型)。
产品分类
Product Category详细介绍
品牌 | YLKBIO | 货号 | YLK10391P |
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规格 | 50T | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 科研实验 | 应用领域 | 化工,生物产业 |
保存条件 | 低温运输,-20℃保存 | 有效期 | 12个月 |
试剂盒说明 | 不同批号的试剂盒组分不可交互使用 |
马流行性感冒病毒RT-PCR检测试剂盒
产品名称:马流行性感冒病毒RT-PCR检测试剂盒
英文名称:Method of the real-time RT-PCR for the detection of Equine Influenza Virus (50 reactions)
马流感是马、驴和骡的一种急性呼吸道疫病,由正黏病毒科 A 型流感病毒属中的两个 A 型流感病毒亚型引起,分别为H7N7(曾称为马-1 型)和 H3N8(曾称为马-2 型)。禽liu感病毒被认为是两种亚型马流感病毒的祖先,易感马科动物的临诊症状表现为发热、刺耳地干咳和鼻流黏性脓性分泌物。
本试剂盒是依据OIE3.5.7 章马流感诊断国际标准中马流感国际参考实验室推荐的针对M 基因可以同时监测H7N7 和H3N8 等马流感病毒亚型的引物和探针序列,优化反应参数配套生产,探针的 5` 端和 3`端分别标记不同的荧光素,如 5`端标记 FAM 荧光素,3`端是 TAMRA 修饰。
【试剂组成】
试剂盒组成成分 | 体积 |
核酸扩增试剂: DEPC 水 马流感荧光 RT-PCR 反应液酶混合物 阴性对照 马流感荧光阳性对照 |
1ml×1 管 750µL×1 管 55µL×1 管 1ml×1 管 1ml×1 管 |
3、 样本采集,存放及运输
3.1 样本采集:所用取样器材必须经高压灭菌并烘干。
用于检测多种样本(如肌肉、脏器、鼻或咽喉拭子、血清或血浆、组织渗出液等)中马流感病毒的 RNA。
3.2 存放:样品应尽快研磨提取核酸进行检测,-70 ℃以下可长期保存,但应避免反复冻融。
3.3 运输:采用冰壶或泡沫箱加冰密封进行运输。
4、 荧光 RT-PCR 检测
4.1 操作方法
4.1.1 样本的处理(在样本制备进行):
4.1.1.1 取 n 个灭菌的 1.5 mL Eppendorf 管,其中 n 为被检样品、阳性对照与阴性对照的和(阳性对照、阴性对照在试剂盒中已标出),做标记。(注:试剂盒中的阳性对照吹打混匀后直接作为PCR 检测的模板,无需提取核酸)
4.1.1.2 每管加入 600 mL 裂解液,分别加入被检样本、阴性对照、阳性对照各 200 mL,一份样本换用一个吸头,再加入 200 mL 氯仿,混匀器上振荡混匀 5 s(不能过于强烈,以免产生乳化层, 也可以用手颠倒混匀),于 4℃ 12 000 r/min 离心 15 min。
4.1.1.3 取与 4.1.1.1 相同数量灭菌的 1.5 mL Eppendorf 管,加入 500 mL 异丙醇(-20℃预冷), 做标记。吸取 4.1.1.2 各管中的上清液转移至相应的管中,上清液应至少吸取 500mL,不能吸出中间层,颠倒混匀。
4.1.1.4 于 4 ℃、12 000 r/min 离心 15 min(Eppendorf 管开口保持朝离心机转轴方向放置),小心倒去上清,倒置于吸水纸上,沾干液体(不同样品须在吸水纸不同地方沾干);加入 600 mL 75% 乙醇,颠倒洗涤。
4.1.1.5 于 4 ℃、12 000 r/min 离心 10 min(Eppendorf 管开口保持朝离心机转轴方向放置),小心倒去上清,倒置于吸水纸上,尽量沾干液体(不同样品须在吸水纸不同地方沾干)。
4.1.1.6 4 000 r/min 离心 10s(Eppendorf 管开口保持朝离心机转轴方向放置),将管壁上的残余液体甩到管底部,小心倒去上清,用微量加样器将其吸干,一份样本换用一个吸头,吸头不要碰到有沉淀一面,室温干燥 3 min,不能过于干燥,以免 RNA 不溶。
4.1.1.7 加入 33 mL DEPC 水,轻轻混匀,溶解管壁上的 RNA,2 000 r/min 离心 5 s,冰上保存备用。提取的 RNA 须在 2 h 内进行 PCR 扩增;若需长期保存须放置-70 ℃冰箱内。
【推荐使用《《病毒基因组 DNA/RNA 离心柱型提取试剂盒》》,更方便快捷高效提取核酸】。注:提取的 RNA 须在 2 h 内进行 PCR 扩增;若需长期保存须放置-70 ℃冰箱内。
4.1.2 检测
4.1.2.1 扩增试剂准备(在反应混合物配制区进行):
从试剂盒中取出相应的荧光 RT-PCR 反应液、酶混合物,在室温下融化后,2000 r/min 离心 5 s。设所需荧光 RT-PCR 检测总数为 n,其中 n 为被检样品、阳性对照与阴性对照的和,每个样品测试反应体系配制见表 2:
表 2 每个样品测试反应体系配制表
试剂 | RT-PCR 反应液 | 酶混合物 |
用量 | 15 μL | 1.0 μL |
根据测试样品的数量计算好各试剂的使用量,加入到适当体积试管中,充分混合均匀,向每个荧光RT-PCR管中各分装15mL,转移至样本处理区。
4.1.2.2 加样(样本处理区进行):
在各设定的荧光RT-PCR管中分别加入上述样本处理步骤4.1.1.7中制备的RNA溶液各10 mL,盖紧管盖,500 r/min离心30 s。(阳性对照不需要提取核酸,可以直接吹打混匀后吸取当模板)
4.1.2.3 荧光 RT-PCR 检测(在检测区进行):
将4.1.2.2中离心后的PCR管放入荧光RT-PCR检测仪内,记录样本摆放顺序。循环条件设置:
第一阶段,反转录 42℃/30 min; 第二阶段,预变性 94℃/2 min;
第三阶段,94℃ /15sec,55℃/10 sec, 60℃/30 sec 共 40 个循环.。荧光收集在第三阶段每
次循环的 60℃延伸时进行。
试验检测结束后,根据收集的荧光曲线和Ct值判定结果。
4.2 结果判定
4.2.1 结果分析条件的设定 阈值设定原则:根据仪器噪声情况进行调整,以阈值线刚好超过阴性对照品扩增曲线的最高点为准。对于多通道荧光 PCR 仪,选定 FAM(465-510)检测通道读取检测结果, ABI 仪器选择 5’FAM; 3’TAMRA 淬灭基团。
4.2.2 质控标准
a) 阴性对照无 Ct 值并且无扩增曲线。
b) 阳性对照的 Ct 值应小于等于 30,并出现典型的扩增曲线。
c) 如阴性和阳性对照不满足以上条件,此次实验视为无效。
4.2.3 结果判定
a) 阴性:无 Ct 值,且无特征性扩增曲线,表明样品为阴性。
b) 阳性:Ct 值≤40.0,且出现典型的扩增曲线,表示样品为阳性,含有马流感病毒核酸。
【注意事项】
1. 实验室应至少分三个区:样品处理区、反应混合物配制区和检测区。
2. 各区物品均为专用,不得交叉使用,避免污染。检测结束后,应立即对工作台进行清洁。
3. 分装反应液时,应尽量避免产生气泡。上机前注意检查各反应管是否盖紧,以免荧光物质泄露污染仪器。
4. 阳性对照在吸取前应在微量漩涡振荡器上剧烈振荡 1~2 秒。
5. 试剂盒中各组分应避免反复冻融。
【规格】 50 份/盒
【贮藏与有效期】荧光 RT-PCR 检测试剂盒-20℃保存,有效期为 12 个月;《病毒基因组 DNA/RNA 离心柱型提取试剂盒》室温保存。
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