简要描述:鼠疫杆菌(YP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)鼠疫是由鼠疫耶尔森氏菌(Yersinia Pestis, YP),简称鼠疫杆菌,引起危害人类健康的烈性传染病之一,具有传染性强、传播迅速、疫情严重、死亡率高等特点, 为国际检疫传染病。
产品分类
Product Category详细介绍
品牌 | YLKBIO | 货号 | YLK10404P |
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规格 | 50T | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 科研实验 | 应用领域 | 化工,生物产业 |
保存条件 | 低温运输,-20℃保存 | 有效期 | 12个月 |
试剂盒说明 | 不同批号的试剂盒组分不可交互使用 |
鼠疫杆菌(YP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
产品名称:鼠疫杆菌(YP)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)
英文名称:Yersinia Pestis Detection Kit (Real-Time PCR Method)
鼠疫是由鼠疫耶尔森氏菌(Yersinia Pestis, YP),简称鼠疫杆菌,引起危害人类健康的烈性传染病之一,具有传染性强、传播迅速、疫情严重、死亡率高等特点, 为国际检疫传染病。
本试剂盒适用于检测动物腺、肝、脾、肺组织及人痰、血液等标本中分离出的鼠疫杆菌,用于鼠疫杆菌的辅助诊断。
本试剂盒采对鼠疫杆菌基因设计特异性的引物和探针,用荧光 PCR 技术对鼠疫杆菌的核酸进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
【试剂组成】
名 称 | 规 格 |
酶液 | 50μL×1 管 |
YP 反应液 | 1.0mL×1 管 |
YP 阳性质控品 | 50μL×1 管 |
阴性质控品 | 250μL×1 管 |
说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【运输及保存】
-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
【适用仪器】
ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
【注意事项】
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理
组织样品:称取组织样品约 0.5g,置于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,匀浆后取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;
痰、尿液等液体样品:取 100μL 于灭菌离心管中;
血液样品:取抗凝血下层血细胞 50μL,加入 100μL 双蒸水吹匀。
1.2 DNA 提取
1) 对上述处理好的标本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒温处理 10min,13,000
rpm 离心 5min,取上清液转移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;
2) DNA 的提取也可以采用我公司生产的 DNA/提取试剂盒
(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
试剂 | YP 反应液 | 酶液 |
用量(样本数为 N) | 20μL | 1μL |
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,21uL/管。
3. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4.1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;
荧光通道选择: 检测通道(Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)
NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
1.1 推荐循环参数设置:
步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 10min | 否 |
2 | 40 cycles | 94℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
2. 结果分析判定
2.1 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
2.2 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤35.0,且曲线有明显的指数增长曲线。
可疑:检测通道 Ct 值>35.0,且出现明显扩增曲线的样本建议重复试验,重复试验结果出现 Ct 值≤35.0 和明显扩增曲线者为阳性,否则为阴性。
阴性:样本检测结果无 Ct 值且无明显的扩增曲线。
3. 检测方法的局限性
Ø 样本检测结果不样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
Ø 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
Ø 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
Ø 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
Ø 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果。
4. 质控标准
阴性质控品:无明显扩增曲线或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
【注意事项】
Ø 所有操作严格按照说明书进行;
Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,wan全混匀并短暂离心;
Ø 反应液应避光保存;
Ø 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区与用工作服;
Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
Ø 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
【参考文献】
[1] 国家质量监督检验检疫总局.SN/T 1280-2003 国境口岸鼠疫检验规程[S].北京:科学出版社, 2003.
[2] 张志凯, 海荣, 蔡虹, 等. 鼠疫耶尔森菌的多重 PCR 检测方法[J]. 中国媒介生物学及控制杂志, 2007.
[3] 吉林省质量技术监督局. DB22/T 2081-2014 鼠疫耶尔森菌核酸的测定-荧光PCR 方法[S].
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